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Ribonuclease R(Rnase R) 核酸外切酶

简要描述:

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更新时间:2024-01-14

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Ribonuclease R(Rnase R) 核酸外切酶

500U

A-PJ1136

Ribonuclease R(Rnase R) 核酸外切酶

5000U

A-PJ1136

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RNase R 来源于 E.coli,通过基因工程重组表达,该酶为 Mg2+依赖的 3’-5’核糖核酸外切酶。其可消化所有线性 RNAs 底物,但不能消化环状 RNA(circular RNA)、套索 RNA(lariat RNA)、双链 RNA、3’突出端<7nt 的双链RNA。本酶可高效的去除不含二级结构的线性 RNA,从而纯化获得环 RNA 分子,用于后续 RNA-sequencing 等实验。

活性定义:在 20 mM Tris-HCl(pH7.5),100 mM KCl,0.5mM Mg2+条件下, 37°C 下水解 1 μg 的 poly-r(A)产物,所需酶量为 1 个活性单位。10xRNase R Buffer:200 mM Tris-HCl, 1 M KCl,5 mM
MgCl2,pH7.5
酶储存液:20 mM Tris-HCl, 100 mM NaCl, 1 mM DTT ,50% Glycerol, 0.1% (w/v) Tween-20, pH 7.5。
储存:置于-20°C 可保存 3 年,避免反复冻融。
使用方法
1. 配制反应体系
RNA 1-10 μg
10xRNase R Buffer 2.5 μl
Rnase Inhibitor (40 U/μl) 0.5 μl
RNase R (20 U/μl) 1-2 μl
DEPC-treated Water up to 25 μl
2. 37℃孵育 30-60min,反应完毕后可加入 5 mM EDTA终止反应。
使用注意事项:
(1) 在 total RNA 的消化中,由于含有二级结构较多的RNA,如 tRNA、rRNA、dsRNA 等,RNase R 对该类底物消化活性大幅下降,此时需要延长消化时间至 2h,并在 1h 时补加 RNase R 进行消化。必要时将反应温度提高至 45℃,以打开含有二级结构的 RNA 分子。
(2) 对于含有 highly structured 的 RNAs,RNase R 仍然无法消化, 稍后将推出 5’-3’的核糖核酸外切酶以解决此类问题。
(3) 据其它文献报道,在含有 highly structured 的 RNAs,可放大反应体积至 50 μl,可降低二级结构的影响,从而促进 RNA 的降解。
(4) 高温和长时间的孵育,可能导致 RNA 的非酶性断裂(水分子的 H+对二酯键的攻击)。因此,消化时间、反应温度均需要根据特定的实验进行优化和调整。


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PCR基本步骤及注意事项?

一、实验原理

PCR是体外人工选择性扩增DNA的一种方法,它类似于生物体内DNA的复制。在生物体内DNA复制需要模板、引物、DNA聚合酶、DNA解旋酶、 dNTPs;而体外PCR反应同样需要类似的成分,有模板、引物、PCR Buffer、Taq酶、dNTPs。其中引物是人工设计的特定序列,实现对特定位置的扩增;PCR Buffer提供一个反应的缓冲环境;反应过程同生物体内一样,DNA双链打开,引物结合模板,延伸形成新链。而这些过程在生物体内靠DNA解旋酶解链,而在体外在通过控制反应温度实现的。如常用94℃变性模板DNA打开双链,在退火温度处引物结合到模板上,最后在72℃完成延伸,并反复重复此过程即可实现对特定片段DNA的大量扩增。到第三循环开始才产生出和靶DNA区段相同的DNA分子,进一步循环地产生出靶DNA区段的指数加倍。

在扩增后期,由于产物积累,使原来呈指数扩增的反应变成平坦的曲线,产物不再随循环数而明显上升,这称为平台效应。平台期(Plateau)会使原先由于错配而产生的低浓度非特异性产物继续大量扩增,达到较高水平。因此,应适当调节循环次数,在平台期前结束反应, 减少非特异性产物。到达平台期(Plateau)所需循环次数取决于样品中模板的拷贝。

二、主要的成分

1.模板可以是多种形式,主要包括基因组DNA、质粒DNA、携带病毒的基因组DNA、PCR产物,cDNA等,但不能为RNA。对于不同类型的模板,其主要不同在于预变性的时间以及模板的量。一般对于大的基因组DNA预变性时间10min足够,质粒DNA2min、携带病毒的基因组DNA预变性2min、PCR产物预变性2min即可。

注意cDNA为单链DNA,但仍可做PCR的模板,只不过在第一轮循环时只有一个引物结合,合成另一条链。从第二轮开始,两个引物均与特异位点结合,从而实现了与常规PCR的接轨。而同作为单链的RNA却不能进行PCR扩增,原因就在于实现PCR反应的是DNA聚合酶,只能特意识别DNA链。

2.对于模版的量来说,一般25ul体系DNA的质量为50—100ng。对于基因组DNA由于其结构比较复杂,提取的浓度也往往比较大,为防止浓度过大对PCR造成影响,故需对提取的DNA进行梯度稀释。否则浓度过高则可能会引起非特异性扩增。对于质粒及PCR产物由于其结构简单,且提取浓度一般较低,则无需稀释。

PCR实验中应该注意的问题有哪些?

没有ct值

检测结果遇到没有Ct值情况,排查是否有以下问题:

1、循环数不够(一般不超过45循环,不仅背景值提高,定量也不准);

2、PCR程序设置错误,检测荧光信号的步骤有误。一般SG法采用72℃延伸时采集,TaqMan法则一般在退火结束时或延伸时采集信号,另外荧光采集是否选中;

3、引物或探针降解。可通过PAGE电泳检测引物和探针是否降解;

4、模板量可能降解或上样量不足(不超过500ng,根据试剂盒说明书即可), 对未知浓度的样本应从系列稀释样本的最高浓度做起;如果发生模板降解,应考虑样本准备中杂质的引入及反复冻融的情况,建议将模板样本小量分装储备,避免反复冻融;

5、引物探针是否合适(尤其是引物跨越内含子,以确保扩增基因组DNA;上下游引物Tm值超过4℃以上也会影响扩增)。

ct值过晚

在相对定量中, Ct值一般控制在15—25之间比较好,如果在绝对定量中, 对低拷贝数的样品,Ct值会增大, 但是一般不宜超过40循环, 否则定量不准确。

因此,判断Ct值出现过晚是否属于非正常情况, 需要根据具体实验设计和目的进行。

1、扩增效率低。引物之间或者引物和探针的比例不合适, 需要进行优化;引物或探针设计不合理, 需要重新设计;

2、PCR程序不合适, 改用三步法进行反应, 或者优化退火/延伸温度, 可以适当降低退火温度; 退火/延伸时间短(可以在推荐的时间条件下延长10s);

3、MgCl2浓度不合适,增加镁离子浓度等。PCR各种反应成分的降解或加样量的不足;

4、PCR产物太长。PCR产物设计超过500bp;

5、模板中存在抑制物。用高纯度模板进行PCR检测或将模板进行稀释。

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